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本试剂盒提供了一种简单、快速、高效的从新鲜组织中提取DNA的方法。组织裂解后，DNA结合于硅基包被磁珠表面。漂洗后，高纯度的DNA洗脱于EB或去离子水中。经过纯化的DNA可以直接用于PCR、Real-time PCR、SNP基因分型、STR基因分型、二代测序和药物基因组学研究等。

• 向25mg Proteinase K粉末中加入1.25mL Proteinase K Storage Buffer使其溶解，-20℃保存。配制好的Proteinase K勿长时间室温放置，以免影响其活性。
  
• 第一次使用前应按试剂瓶标签说明先在Buffer GW1和Buffer GW2中加入无水乙醇。
  
• 使用前请检查Buffer GTL和Buffer GL是否出现结晶或者沉淀，如有结晶或者沉淀，请将Buffer GTL和Buffer GL于56℃水浴重新溶解。
  
• 如果下游实验对RNA污染比较敏感，可以在加入Buffer GL前加入2μL DNase-Free的RNase A（100mg/mL），试剂盒中的RNase A如果长时间不用，建议-20℃保存。
  
• 实验开始前将水浴锅或恒温混匀仪预热至56℃。
  
• Magbeads PN严禁冰冻和高速离心，否则可能会对Magbeads PN造成不可逆的损害。Magbeads PN每次使用时请充分振荡混合均匀。

• 称取20～30mg组织，将组织在液氮中磨碎或使用组织匀浆机打碎，将打碎的组织转移到1.5mL离心管中。
  
• 向上述管中加入180μL Buffer GTL和20μL Proteinase K之后将离心管固定于56℃、1200rpm恒温混匀仪上震荡裂解1小时或56℃水浴过夜至固体组织充分裂解，即为Lysate。
  
• 可选步骤，如果少量RNA的存在会对下游实验造成影响，建议向Lysate中加入2μL浓度为100mg/mL的RNase A溶液，震荡混匀，室温放置2min。
  
• 向Lysate中加入200μL Buffer GL，涡旋振荡混匀。
  
• 向离心管中加入200μL异丙醇与10μL Magbeads PN后涡旋震荡混匀5秒钟，之后将离心管固定于25℃、1600rpm的恒温混匀仪上震荡结合10分钟。
  
• 将离心管固定于磁力架上静置1分钟，之后弃去溶液。
  
• 向离心管中加入750μL Buffer GW1（使用前请检查是否已加入无水乙醇），涡旋震荡5秒钟后放于25℃、1600rpm的恒温混匀仪上震荡结合2分钟。
  
• 将离心管固定于磁力架上静置1分钟，之后弃去溶液。
  
• 重复步骤7-8。
  
• 向离心管中加入750μL Buffer GW2（使用前请检查是否已加入无水乙醇），涡旋震荡5秒钟后放于25℃、1600rpm的恒温混匀仪上震荡结合2分钟。
  
• 将离心管固定于磁力架上静置1分钟，之后弃去溶液。
  
• 重复步骤10-11。
  
• 离心管短暂离心后，将其重新固定于磁力架上用移液器去除管底溶液，之后开盖室温放置5～10分钟使乙醇充分挥发。
  
• 向离心管中加入50～200μL Buffer EB后涡旋震荡使磁珠充分悬浮于洗脱液中，之后将离心管固定于56℃、1600rpm的恒温混匀仪上震荡洗脱10分钟。
  
• 将离心管固定于磁力架上静置2分钟，之后将洗脱液转移至新的离心管中-20℃保存备用。